Забор самозанятых биоматериалов что это

Опубликовано: 08.05.2024

Об актуальных изменениях в КС узнаете, став участником программы, разработанной совместно с АО "Сбербанк-АСТ". Слушателям, успешно освоившим программу выдаются удостоверения установленного образца.

Программа разработана совместно с АО "Сбербанк-АСТ". Слушателям, успешно освоившим программу, выдаются удостоверения установленного образца.

Обзор документа

Письмо Министерства здравоохранения РФ от 10 апреля 2020 г. N 17-1/И/1-2004 О направлении Временной инструкции по вопросам забора биологического материала у всех пациентов с подозрением на пневмонию или с подтвержденной пневмонией, поступающих на госпитализацию в стационары

Министерство здравоохранения Российской Федерации во исполнение пункта 2 Перечня поручений по итогам заседания Координационного совета при Правительстве Российской Федерации по борьбе с распространением новой коронавирусной инфекции на территории Российской Федерации от 8 апреля 2020 г. направляет для использования в работе и неукоснительного соблюдения подведомственными медицинскими организациями Временную инструкцию по вопросам забора биологического материала у всех пациентов с подозрением на пневмонию или с подтвержденной пневмонией, поступающих на госпитализацию в стационары.

Инструкция подготовлена Минздравом России совместно с главным внештатным специалистом пульмонологом Минздрава России С.Н. Авдеевым и специалистами федерального государственного бюджетного учреждения "Национальный медицинский исследовательский центр фтизиопульмонологии и инфекционных заболеваний" Минздрава России.

Инструкция размещена на сайте Минздрава России в разделе "Информация о новой коронавирусной инфекции COVID-19".

Приложение: на 6 л. в 1 экз.

Е.Г. Камкин

Временная инструкция
по вопросам забора биологического материала у всех пациентов с подозрением на пневмонию или с подтвержденной пневмонией, поступающих на госпитализацию в стационары

Установление причины возбудителя при внебольничной пневмонии или вирусной пневмонии (связанной с вирусом SARS-CoV-2) в 100% в настоящее время невозможно:

- В условиях пандемии COVID-19 существуют строгие предостережения по поводу получения для посевов образцов индуцированной или экспекторированной мокроты, а также проведения методов фибробронхоскопии - данные методы увеличивают дистанцию аэрозольного облака, содержащего вирусы, что повышает риск инфицирования медицинского персонала.

- Даже вне периода пандемии вирусной инфекции рутинные бактериологические методы позволяют выявить причину внебольничной пневмонию лишь в 50-60% случаев (не все микроорганизмы могут быть обнаружены культуральными методами (например, внутриклеточные микроорганизмы), на результаты исследований оказывают большое влияние предшествующий прием антибиотиков и другие факторы).

- По предварительным данным, лабораторное подтверждение COVID-19 с помощью ПЦР возможно лишь в 70-80% случаев (т.е. чувствительность метода составляет 70-80%). Причинами ложноотрицательных результатов ПЦР-тестов являются время инфекции (низкий процент результатов в ранние сроки), качество и место забора биологического материала.

Микробиологические исследования с целью выявления этиологического агента (агентов) внебольничных пневмоний

Для выявления этиологического агента (агентов) внебольничных пневмоний (ВП) спектр микробиологических исследований включает:

- ПЦР-исследование респираторных образцов на SARS-CoV-2, вирусы гриппа типа А и В, респираторно-синцитиальный вирус (РСВ), вирусы парагриппа, риновирусы, аденовирусы, человеческие метапневмовирусы;

- классическое культуральное исследование респираторных образцов и крови на бактерии (кровь исследуется бактериологическим методом только при тяжелой внебольничной пневмонии);

- экспресс-тесты по выявлению пневмококковой и легионеллезной антигенурии.

С целью выяснения этиологического агента (агентов) при подозрении на внебольничную пневмонию исследуется: мокрота при спонтанном откашливании; трахеобронхиальный аспират и бронхоальвеолярный (у интубированных пациентов); плевральная жидкость.

При исследовании на SARS-CoV-2 и другие респираторные вирусы, а также на Chlamydophila pneumonia, Mycoplasma pneumonia рекомендуется исследование мазков из верхних дыхательных путей (из нижнего носового хода (из двух носовых ходов и с задней стенки глотки), которые берут у пациента как можно раньше от момента появления симптомов, в одну пробирку и исследуют как один образец.

У госпитализированных пациентов материал для исследования следует собирать как можно раньше при поступлении (не позднее вторых суток), поскольку в более поздние сроки не исключена возможность суперинфекции.

Сбор биологического материала для бактериологического исследования следует проводить до назначения антибиотиков.

В случае летального исхода исследуется посмертный (аутопсийный) материал.

Взятие диагностического материала, его упаковка, маркировка и транспортировка осуществляется в соответствии с СП 1.3.3118-13 "Безопасность работы с микроорганизмами I-II групп патогенности (опасности)".

Медицинские работники, которые собирают, упаковывают клинические образцы, должны быть обучены требованиям и правилам биологической безопасности при сборе и работе с материалом, подозрительным на зараженность микроорганизмами II группы патогенности, строго соблюдать меры предосторожности и использовать средства индивидуальной защиты.

1. Методика получения и условия хранения биологического материала для культурального и ПЦР-исследования

Особенности сбора проб у разных категорий пациентов

Мазки со слизистой оболочки верхних дыхательных путей

Мазки со слизистой оболочки носоглотки и задней стенки ротоглотки берут после полоскания полости рта кипяченой водой комнатной температуры. Если полость носа заполнена слизью, перед процедурой рекомендуется провести высмаркивание. В течение 6-ти часов перед процедурой нельзя использовать медикаменты, орошающие носоглотку или ротоглотку и препараты для рассасывания во рту.

У детей мазки со слизистой носоглотки берут сухим стерильным назофарингеальным велюр-тампоном на пластиковом аппликаторе. Зонд вводят легким движением по наружной стенке носа на глубину 2-3 см до нижней раковины, слегка опускают книзу, вводят в нижний носовой ход под нижнюю носовую раковину, делают вращательное движение и удаляют вдоль наружной стенки носа. Общая глубина введения зонда должна составлять примерно половину расстояния от ноздри до ушного отверстия (3-4 см для детей). После сбора материала конец зонда с тампоном опускают в стерильную одноразовую пробирку с транспортной средой до места слома, при этом гибкая часть зонда складывается в три раза, далее, прикрывая сверху пробирку крышкой, рукоятку зонда опускают вниз, добиваясь полного отламывания верхней части зонда. Пробирку герметично закрывают.

У взрослых мазки со слизистой носоглотки берут сухим стерильным назофарингеальным тампоном на пластиковом аппликаторе. Зонд вводят легким движением по наружной стенке носа на глубину 2-3 см до нижней раковины, слегка опускают книзу, вводят в нижний носовой ход под нижнюю носовую раковину, делают вращательное движение и удаляют вдоль наружной стенки носа. Общая глубина введения зонда должна составлять примерно половину расстояния от ноздри до ушного отверстия (не менее 5 см для взрослых). После забора материала конец зонда с тампоном опускают на глубину 1 см в стерильную одноразовую пробирку с транспортной средой, конец зонда отламывают, придерживая крышкой пробирки, опустив рукоятку зонда вниз. Пробирку герметично закрывают.

Мазки из ротоглотки берут сухим стерильным зондом из полистирола с вискозным тампоном вращательными движениями с поверхности миндалин, небных дужек и задней стенки ротоглотки, аккуратно прижимая язык пациента шпателем. После забора материала рабочую часть зонда с тампоном помещают в пробирку с транспортной средой и зондом с мазком из носоглотки. Конец зонда с тампоном (1 см) отламывают, придерживая крышкой пробирки с расчетом, чтобы он позволил плотно закрыть пробирку. Допускается хранение в течение трех суток при температуре 2-8°С, более длительно - при температуре не выше минус 16°С (AI).

Мокроту при глубоком откашливании собирают в стерильные одноразовые герметично закрывающиеся контейнеры натощак после чистки зубов и полоскания полости рта водой. Пациента просят сделать несколько глубоких вдохов с задержкой дыхания на несколько секунд, затем с силой выдохнуть, что способствует появлению продуктивного кашля и очищению верхних дыхательных путей от мокроты. Мокроту помещают в стерильные одноразовые пластиковые контейнеры. Допускается хранение в течение 1 суток при температуре от 2 до 8°С, более длительно - при температуре не выше минус 16°С.

Аутопсийный материал забирают стерильным индивидуальным инструментом из зоны поврежденной ткани объемом 1-3 стерильными инструментами (индивидуально для каждого органа), помещают в одноразовые стерильные пластиковые контейнеры с герметично завинчивающейся крышкой, замораживают и хранят при температуре не выше минус 16°С (AI).

Исследуется аутопсийный материал следующих органов: фрагменты пораженной части трахеи, пораженной части бронхов, пораженной части легких, выпот плевральной полости (при его наличии).

Материал для исследования должен быть нативным (без фиксации формалином)!

Получение плевральной жидкости

Взятие материала осуществлять в одноразовые, плотно завинчивающиеся пробирки объемом 10-15 мл.

Перед манипуляцией производится дезинфекция кожи 70% этиловым спиртом, затем 1-2% раствором йода, избыток йода удаляется марлевой салфеткой, смоченной 70% спиртом во избежание ожога кожи пациента. После этого выполняется чрезкожная аспирация для получения пробы плевральной жидкости, при тщательном соблюдении правил асептики. Объем пробы должен составлять не менее 5 мл. Из шприца удаляются все пузырьки воздуха, после чего проба немедленно переносится в стерильный пластиковый контейнер. Контейнер плотно закрывается крышкой.

До момента транспортировки образец вместе с направлением на бактериологическое исследование хранится в холодильнике при температуре +4-8°С. Продолжительность хранения плевральной жидкости при комнатной температуре не должна превышать 2 часов.

Для исследования методом ПЦР допускается хранение образца в течение 1 суток при температуре от 2 до 8°С, более длительно - при температуре не выше минус 16°С.

2. Правила получения и транспортировки мочи для определения антигена легионелл или пневмококка

Образцы мочи для исследования объемом 5-10 мл помещают в стандартные пластиковые контейнеры и хранят при комнатной температуре (15-30°С) не более 24 ч. после забора перед постановкой реакции. В случае необходимости образцы могут храниться при температуре 2-8°С до 14 дней или при -20°С в течение длительного времени для первичного или повторного исследования. В качестве консерванта может быть использована борная кислота. Перед постановкой реакции охлажденные или замороженные образцы мочи исследуют на наличие антигена после достижения комнатной температуры.

3. Правила получения венозной крови для бактериологического исследования

Для сбора крови с целью бактериологического исследования используются коммерческие герметично закрывающиеся стеклянные флаконы или флаконы из ударопрочного автоклавируемого пластика двух видов (содержащие питательную среду для выделения аэробов и анаэробов). Забор крови производится шприцем, кровь асептически переносится во флакон с транспортной средой непосредственно через резиновую пробку.

Забираются 2 образца венозной крови с интервалом 20-30 минут из различных периферических вен - например, левой и правой локтевой вены. Один образец помещается во флакон для выделения аэробов, другой для выделения анаэробов. Объем крови при каждой венепункции должен составлять не менее 10 мл (для взрослых) и 3 мл (для детей).

Непосредственно перед венепункцией производится дезинфекция кожи в месте венепункции циркулярными движениями от центра к периферии дважды 70% раствором спирта или 1-2% раствором йода. Необходимо дождаться полного высыхания дезинфектанта, и провести манипуляцию, ее касаясь места обработки кожи.

После венепункции следует удалить оставшийся йод с поверхности кожи, чтобы избежать ожога.

До момента транспортировки с целью бактериологического исследования образец вместе с направлением хранится при комнатной температуре (не более 2 часов) или в термостате.

4. Маркировка материала для лабораторного исследования

На этикетке пробирок (контейнеров) с материалом указывается: порядковый номер образца, соответствующий номеру в сопроводительном документе, и, по возможности, фамилия и инициалы пациента, тип биоматериала.

В сопроводительном документе (направлении) к биоматериалу, собранному для исследования в лаборатории, необходимо указать:

- наименование учреждения, которое направляет биоматериал на исследования, телефон, адрес электронной почты;

- фамилию и имя обследуемого лица;

- возраст или дата рождения;

- дату взятия биоматериала для лабораторного исследования;

- дату заболевания или контакта с больным;

- предварительный клинический диагноз или повод к обследованию;

- степень тяжести заболевания;

- данные эпидемиологического анамнеза;

- ФИО, должность, сотрудника, отправившего биоматериал, дату отправки биоматериала и контактный телефон, по которому можно связаться с данным сотрудником.

5. Транспортирование биологического материала для проведения микробиологических исследований

Транспортировка образцов должна осуществляться с соблюдением требований СП 1.2.036-95 "Порядок учета, хранения, передачи и транспортирования микроорганизмов I-IV групп патогенности".

Медицинские работники, которые транспортируют образцы в лабораторию, должны быть обучены требованиям и правилам биологической безопасности при работе и сборе материала, подозрительного на зараженность микроорганизмами II группы патогенности, строго соблюдать меры предосторожности и использовать средства индивидуальной защиты.

При необходимости транспортирования внутри одного здания, пробирки/контейнеры с биологическим материалом помещают в штативы и специальные герметичные контейнеры-переноски. Транспортирование производится при комнатной температуре в течение 3 часов, более длительно - при температуре от 2 до 8°С.

При необходимости транспортирования биологического материала в другие организации, образцы каждого пациента помещают в индивидуальный герметичный пакет с адсорбирующим материалом и дополнительно упаковывают в общий герметичный пакет, помещаемый в термоконтейнер (AI). Транспортирование производится в термоконтейнерах при температуре от 2 до 8°С (AI). В контейнер желательно поместить одноразовый индикатор, контролирующий соблюдение требуемой температуры.

Сопроводительные документы помещаются в индивидуальную упаковку отдельно от биологического материала и прочно прикрепляются снаружи контейнера.

Оценка приемлемости образцов

После доставки образца в лабораторию сотрудник лаборатории, принимающий материал, должен проверить правильность оформления направления на исследование, маркировку пробирок с образцами биологического материала, их целостность и зарегистрировать поступивший материал в рабочем журнале в бумажной или электронной форме. Нумерация образцов при регистрации должна быть идентична нумерации в бланках направлений на молекулярно-биологическое исследование.

Непригодными для исследования являются образцы:

- немаркированные или несущие неверную (нечитаемую) маркировку;

- для которых не указаны дата получения материала;

- хранившиеся и транспортировавшиеся с нарушением требований, установленных для данного типа биологического материала;

- с нарушением целостности и/или герметичности тары (пробирок и др.) (в т.ч. пролитые образцы).

В случае непригодности доставленного образца необходимо уведомить врача, назначившего исследование, и рекомендовать повторное взятие материала с соблюдением всех перечисленных правил.

Если повторное взятие таких образцов материала невозможно, при оформлении результата ПЦР-исследования необходимо отразить возможность влияния нарушения правил преаналитического этапа на полученный результат.

Обзор документа

Минздрав подготовил временную инструкцию по забору биоматериала у пациентов с пневмонией или подозрением на нее, поступающих на госпитализацию в стационары. Прописан порядок транспортировки биоматериала для клинических исследований.

Для получения плазмы забор крови производят натощак или через 3 часа после приема пищи из локтевой вены одноразовой иглой (диаметр 0,8 − 1,1 мм) в специальную вакуумную систему (сиреневые крышки − 6% ЭДТА) или одноразовым шприцем в пластиковые пробирки с цитратом натрия (3,8%-ный раствор цитрата натрия в соотношении 1:9), объем крови 4 мл. Пробирку закрывают крышкой и аккуратно переворачивают несколько раз вверх дном, чтобы кровь в пробирке тщательно перемешалась с антикоагулянтом (в противном случае кровь свернется, и выделение ДНК/РНК станет невозможным).

Гепарин в качестве антикоагулянта использовать нельзя! Для получения сыворотки забор крови проводят натощак из локтевой вены одноразовой иглой (диаметр 0,8 − 1,1 мм) в одноразовые пробирки без антикоагулянта.

Условия хранения и перевозки материала:

- при температуре 20−25 °С — в течение 6 часов;

- при температуре +2+8 °С — в течение 6 часов с момента взятия материала для количественного определения нуклеиновых кислот; в течение 12 ч − для качественного определения нуклеиновых кислот и для определения полиморфизма в геноме человека. Транспортировать в вертикальном положении!

У мужчин при мочеиспускании необходимо полностью оттянув кожную складку, освободить наружное отверстие мочеиспускательного канала.

При определении микобактерий туберкулеза для анализа отбирают среднюю порцию утренней мочи в количестве 15−25 мл в специальный сухой стерильный флакон или контейнер на 50-60 мл.

Условия хранения и перевозки материала:

- при температуре +2+8 °С – в течение 3 суток.

- Соскобное отделяемое из цервикального канала

- Соскоб из уретры у мужчин и женщин

- Соскоб крайней плоти головки полового члена (ГПЧ)

Транспортная среда с муколитиком

Порядок взятия клинического материала в пробирку с транспортной средой:

1. Открыть крышку пробирки.

2. С помощью одноразового стерильного зонда получить отделяемое соответствующего

биотопа (влагалище, уретра, цервикальный канал).

3.Перенести зонд с клиническим материалом в пробирку с транспортной средой объемом 1,5 мл, когда зонд упрется в дно пробирки, дополнительным усилием согнуть тонкую часть зонда до насечки, затем отломить и оставить зонд в пробирке .При необходимости получения клинического материала из нескольких биотопов повторить процедуру, каждый раз забирая клинический материал новым зондом в новую пробирку.

3. Пробирку плотно закрыть крышкой, промаркировать.

Особенности взятия клинического материала цервикального канала:

1.Клинический материал цервикального канала получают после введения во влагалище гинекологического зеркала с помощью уретрального зонда или цервикальной цитощетки (для исследования на ВПЧ необходимо достаточное количество эпителиальных клеток!).

2.Перед взятием клинического материала необходимо тщательно обработать отверстие цервикального канала с помощью стерильного марлевого тампона и затем обработать шейку матки стерильным физиологическим раствором.

3.После введения уретрального зонда в шеечный канал на 1,5 см его вращают несколько раз (2-3 полных оборота по часовой стрелке) и извлекают . При извлечении зонда необходимо полностью исключить его касание стенок влагалища.

4. Полученный клинический материал помещается в пробирку с транспортной средой (см. выше).

Особенности взятия клинического материала из влагалища:

В день обследования женщины не должны проводить туалет половых органов и спринцевание влагалища.

1. Клинический материал из влагалища получают с заднего или боковых сводов с помощью вагинального или уретрального зонда путем соскоба с поверхности эпителия.

2. Клинический материал должен быть получен ДО проведения мануального исследования.

3. Перед манипуляцией гинекологическое зеркало можно смочить теплой водой, применение антисептиков для обработки зеркала противопоказано.

4. У девочек (virgo) клинический материал получают со слизистой оболочки преддверия влагалища без использования гинекологического зеркала.

5. Полученный клинический материал помещается в пробирку с транспортной средой (см. выше).

Особенности взятия клинического материала из уретры у женщин:

1. Клинический материал из уретры получают с помощью уретрального зонда.

2.Перед взятием клинического материала пациентке рекомендуется воздержаться от мочеиспускания в течение 1,5-2 часов.

3. При наличии свободных уретральных выделений наружное отверстие уретры следует очистить с помощью ватного тампона.

4. При отсутствии свободных выделений может быть проведен легкий массаж уретры.

5. После введения инструмента в уретру на глубину 1 см необходимо продвигать его к наружному отверстию, слегка нажимая на заднюю и боковые стенки уретры (вращательные движения болезненны).

6. Полученный клинический материал помещается в пробирку с транспортной средой(см. выше).

Для исследования материала ,полученного из нескольких биотопов, процедуру повторяют, каждый раз используя новый стерильный зонд и новую пробирку.

Недопустимо смешивать материал из цервикального канала, влагалищного содержимого и уретры в одной пробирке!

Особенности взятия клинического материала из уретры у мужчин:

Перед взятием биоматериала пациенту рекомендуется воздержаться от мочеиспускания в течение

1,5–2 часов. Для исключения искажений результатов определения состава микрофлоры урогенитального тракта мужчин из-за присутствия в урогенитальном тракте транзиторной микрофлоры в течение трёх дней перед взятием биоматериала рекомендуется половое воздержание или использование защищенного полового контакта.

1.Перед взятием соскоба из уретры обрабатывают головку полового члена в области наружного отверстия уретры тампоном, смоченным стерильным физиологическим раствором.

2.Производят массаж уретры. При наличии свободно стекающих из уретры выделений удаляют их сухим тампоном.

3.Вводят зонд в уретру на глубину 1-2 см. Несколькими вращательными движениями производят соскоб эпителиальных клеток и переносят зонд в пробирку с транспортной средой, обламывают и оставляют. Отделяемое забирают в достаточном количестве. Допустимо умеренное присутствие примесей в виде слизи, крови и гноя.

Взятия клинического материала с крайней плоти головки полового члена (ГПЧ):

Перед взятием биоматериала пациенту рекомендуется воздержаться от мочеиспускания в течение

1.С помощью одноразового зонда делают соскоб эпителиальных клеток из соответствующего биотопа (крайняя плоть головки полового члена, препуциальный мешок) и переносят зонд в пробирку с транспортной средой, обламывают и оставляют.

Условия хранения и транспортировки биоматериала:

1. Пробирки с полученным клиническим материалом должны быть промаркированы.

2. В сопроводительном документе-направлении необходимо указать: ФИО, возраст пациентки (та), клинический материал, предполагаемый диагноз, показания к обследованию, дату и время взятия пробы, наименование учреждения (подразделения), направляющего клинический материал.

3. Если время транспортировки клинического материала от момента взятия до момента его доставки в лабораторию не более суток, то пробирку с клиническим материалом необходимо хранить и доставлять в лабораторию при температуре бытового холодильника (+ 4+10°С), не замораживая.

Особенности взятия эякулята (семенной жидкости):

Внимание! Перед взятием эякулята рекомендуется половое воздержание в течение трёх суток до исследования.

1.Перед сбором эякулята пациент мочится в туалете, пол-

ностью опорожняя мочевой пузырь.

2.После мочеиспускания пациент должен тщательно вы- мыть руки с мылом и провести туалет наружных половых органов с мылом и водой, головку полового члена и крайнюю плоть необходимо высушить стерильной салфеткой.

3.Эякулят получают путем мастурбации и собирают в стерильный контейнер объёмом до 60 мл.

4.Емкость с эякулятом герметично закрывают крышкой и маркируют.

Условия хранения материала:

- при комнатной температуре — в течение 6 часов;

- при температуре +2+8 °С — в течение 1 суток;

5. Секрета простаты (предстательной железы)

При подозрении на острый простатит выполнять массаж простаты категорически запрещено.

1.Перед взятием секрета простаты головку полового члена обрабатывают стерильным ватным тампоном, смоченным физиологическим раствором.

2.Секрет простаты собирают после предварительного массажа простаты через прямую кишку, массаж проводит врач посредством энергичного надавливающего движения от основания к верхушке железы.

3.После окончания массажа выделившийся простатический секрет в виде свободно стекающей капли (0,5-1,0 мл) собирают в одноразовую сухую стерильную пробирку объёмом 2 мл или контейнер объёмом до 60 мл.

4.Емкость с секретом простаты герметично закрывают крышкой и маркируют.

Условия хранения материала:

- при комнатной температуре — в течение 6 часов;

- при температуре 2−8 °С — в течение 1 суток;

6. Остаточная моча после массажа простаты

Особенности взятия остаточной мочи после массажа простаты:

Внимание! Перед взятием остаточной мочи после массажа простаты рекомендуется половое воздержание в течение трёх суток до исследования.

При подозрении на острый простатит выполнять массаж простаты категорически запрещено.

1.Пациент мочится в туалете, оставляя часть мочи в мочевом пузыре.

2.Перед сбором мочи головку полового члена обрабатывают стерильным ватным тампоном, смоченным физиологическим раствором.

3.В течение 1-3 минут пациенту проводят массаж предстательной железы, интенсивность массажа зависит от консистенции простаты: при мягкой предстательной железе осуществляют несильные надавливания, при плотной консистенции простаты силу давления увеличивают.

4.После массажа простаты пациент собирает первые 10-

15 мл мочи в стерильный пластиковый контейнер для сбора мочи, объёмом до 60 мл.

5.Емкость с мочой герметично закрывают крышкой и маркируют.

Условия хранения материала:

- при комнатной температуре — в течение 6 часов;

- при температуре +2+8 °С — в течение 1 суток;

1.Биопсийный материал помещают в стерильную пробирку со стерильным физраствором или водой (не более 0,5 мл) или в пустую стерильную пробирку.

2. Емкость с биоптатом герметично закрывают крышкой и маркируют.

Условия хранения и перевозки материала:

- при комнатной температуре — в течение 6 часов;

8.Биопсийный или аутопсийный материал

Кусочки ткани диаметром не более 5 мм помещают в одноразовые стерильные пробирки объемом 2 мл, содержащих соответствующую транспортную среду. Пробирку плотно закрывают. Макроаутоптат помещают в контейнер с физиологическим раствором или специальной транспортной средой.

Условия хранения и перевозки материала:

- при комнатной температуре — в течение 6 часов;

- при температуре +2+8 °С — в течение 3 суток;

- при температуре минус 20 °С — в течение 1 недели.

После взятия материала тампон (рабочую часть зонда с ватным тампоном) помещают в одноразовую стерильную пробирку с защелкивающейся крышкой объемом 2 мл, содержащую соответствующую транспортную среду. Погрузив рабочую часть зонда в транспортную среду, аккуратно обламывают пластиковый стержень на расстоянии не более 0,5 см от рабочей части и оставляют рабочую часть зонда с материалом в транспортной среде. Пробирку плотно закрывают крышкой.

Условия хранения и перевозки материала

- при комнатной температуре — в течение 6 часов;

- при температуре +2+8 °С — в течение 3 суток;

Условия хранения и перевозки материала:

- при температуре +2+8 °С — в течение 1 суток.

Используют пробы фекалий массой (объемом) примерно 1−3 г (1−3 мл). Исследование мазков неинформативно из-за низкого содержания в них возбудителей. Пробу в количестве 1 г (примерно) отдельным наконечником с фильтром или одноразовыми лопатками переносят в специальный стерильный флакон.

Условия хранения и перевозки материала:

Образцы нативных фекалий:

- при комнатной температуре — в течение 6 часов;

Спинномозговую жидкость в количестве не менее 1 мл собирают, используя одноразовые иглы, в одноразовые пластиковые про- бирки объемом 1,5 или 2,0 мл.

Условия хранения и перевозки материала:

- при температуре +2+8 °С — в течение 1 суток;

Перед получением слюны проводят трехкратное полоскание полости рта физиологическим раствором. Слюну забирают в количестве не менее 1,0 мл в одноразовые стерильные пластиковые пробирки объемом 2 мл. Пробирку плотно закрывают крышкой.

Условия хранения материала:

- при комнатной температуре — в течение 6 ч;

Взятие мокроты осуществляют в количестве не менее 1,0 мл в одноразовые градуированные стерильные флаконы с широким горлом и завинчивающимися крышками объемом не менее 50 мл. См. на сайте правила сбора мокроты.

Условия хранения и перевозки материала:

- при комнатной температуре — в течение 6 часов;

- при температуре +2+8 °С — в течение 3 суток;

15.Бронхоальвеолярный лаваж или промывные воды бронхов

Условия хранения и перевозки материала:

- при температуре +2+8 °С — в течение 1 суток;

Мазки берут сухими стерильными ватными тампонами на пластиковой основе. Тампон вводят легким движением по наружной стенке носа на глубину 2−3 см до нижней раковины. Затем тампон слегка опускают книзу, вводят в нижний носовой ход под нижнюю носовую раковину, делают вращательное движение и удаляют вдоль наружной стенки носа. После взятия материала тампон (рабочую часть зонда с ватным тампоном) помещают в стерильную одноразовую пробирку с защелкивающейся крышкой, содержащую соответствующую транспортную среду, и аккуратно обламывают пластиковый стержень на расстоянии не более 0,5 см от рабочей части, оставляя рабочую часть зонда с материалом в транспортной среде. Пробирку плотно закрывают крышкой.

Условия хранения и перевозки материала:

- при комнатной температуре — в течение 6 часов;

Взятие материала проводят в положении больного сидя с отклоненной назад головой путем введения с помощью одноразового шприца (зонда) теплого стерильного изотонического раствора натрия хлорида (3−5 мл) поочередно в каждый из носовых ходов. Промывную жидкость собирают через стерильную воронку в одну стерильную пробирку.

Не допускается повторное использование воронки без предварительного обеззараживания паром под давлением.

Условия хранения материала:

- при температуре +2+8 °С — в течение 6 ч;

Мазки берут сухими стерильными ватными тампонами на пластиковой основе вращательными движениями с поверхности миндалин, небных дужек и задней стенки ротоглотки. После взятия материала тампон (рабочую часть зонда с ватным тампоном) помещают в стерильную одноразовую пробирку со специальной транспортной средой и аккуратно обламывают пластиковый стержень на расстоянии не более 0,5 см от рабочей части, оставляя рабочую часть зонда с материалом в транспортной среде. Пробирку плотно закрывают крышкой.

Условия хранения и перевозки материала:

- при комнатной температуре — в течение 6 часов;

Перед взятием смывов из ротоглотки проводят предварительное полоскание полости рта водой. После этого проводят тщательное полоскание ротоглотки в течение 10−15 с 25−40 мл изотонического раствора натрия хлорида. Жидкость собирают через стерильную воронку в стерильный флакон объемом 50-60 мл.

Условия хранения и перевозки материала:

- при комнатной температуре — в течение 6 часов;

Перед взятием материала кожные элементы очищают ватным тампоном, смоченным эфиром или спиртом, затем прокалывают их у основания стерильной иглой или тонким капилляром пастеровской пипетки. Для ускорения поступления материала элемент сверху надавливают пинцетом. Корку или верхнюю часть везикул отделяют от кожи иглой, скальпелем. Исследуемый материал помещают в пробирку с транспортной средой.

Условия хранения и перевозки материала:

- при комнатной температуре — в течение 6 часов;

Для удаления присосавшегося клеща следует обратиться в травмпункт по месту жительства. При отсутствии такой возможности удалить присосавшегося клеща самостоятельно одним из следующих способов:

1.Накинуть на основание погружённого хоботка петлю из простой нити. Снимать клеща с кожных покровов следует осторожно, чтобы не оторвать хоботок!

2.Концы нити соединить вместе и медленно скручивать до полного затягивания петли и извлечения клеща. Избегайте раздавливания клеща!

3.Поместить клеща в сухую чистую пробирку объемом 1,5 мл.

При возможности клеща можно удалить при помощи кусочка льда, приложив его к месту присасывания на некоторое время. От холода клещ сам вытаскивает хоботок и отделяется.

Извлечённого клеща необходимо доставить в учреждение, где проведут исследование на заражённость его вирусом клещевого энцефалита.

При этом необходимо помнить, что:

1.Клещей нельзя смазывать маслами, кремами, вазелином, керосином и т.п.

2.Для исследования пригодны живые клещи, высушенные.

3.Удалённого клеща следует поместить в чистую посуду (пробирка, пузырёк, баночка и т.д.), в которую с целью создания повышенной влажности предварительно поместить чуть смоченную водой бумажную салфетку.

4.Хранение и доставка клещей с соблюдением вышеуказанных условий возможны в течение 2 суток.

Гистологическое исследование биопсийного материала проводят после различных эндоскопических процедур и операций со взятием образца на анализ. Его задача состоит не только в обнаружении раковых клеток, но и любых патологических изменений в тканях. Гистологическое исследование помогает установить точный диагноз и назначить эффективное лечение.

Для чего назначается

Гистологическое исследование – это микроскопическое изучение биоматериала, взятого в патологическом очаге больного. Это самый точный метод для обнаружения опасных клеток, он является обязательной процедурой в обследовании пациента с подозрением на онкологию. Ценность его результатов несравнима с ультразвуковым исследованием или рентгеном.

Задачи гистологического исследования:

установление, подтверждение, уточнение или опровержение серьезных диагнозов;
обнаружение онкологии на ранней стадии;
подтверждение или опровержение злокачественности новообразований;
установление стадии и динамики опухолевого процесса;
обнаружение наиболее действенных лекарств для дальнейшего лечения;
проверка эффективности терапии по анализу изменений в тканях;
диагностика состояния органов при тяжелых патологиях, например, циррозе печени;
получение данных для плановой операции и т. д.

Для получения подробной консультации необходимо записаться на прием к узкому специалисту в медицинский центр. Врач определит целесообразность биопсии и вид вмешательства.

Цена исследования напрямую зависит от сложности процедуры.

Подобные процедуры планируются заранее (кроме срочной биопсии во время операции). Манипуляции по взятию биоматериала для исследования требуют подготовки пациента.

Биопсия проводится с применением анестезии, поэтому перед процедурой нельзя есть и пить. Необходимо сделать анализ крови на наличие ряда инфекций. Пациенту даются рекомендации по поводу исключения определенных препаратов за несколько дней до исследования.

Клиники используют несколько способов взятия биопсийного материала на гистологическое исследование.

Методика забора биоптата

Взятие материала толстой полой иглой путем пункции патологического очага. В результате манипуляции получают столбики тканей.

Отсечение части органа или опухоли в ходе хирургической операции.

Отсасывание содержимого вакуумом из патологических образований, например, миомы матки или узлов в щитовидке.

Иссечение целого органа или новообразования с последующим вырезанием из него фрагментов для анализа.

Взятие образца специальными биопсийными щипцами при бронхоскопии, колоноскопии, ФГДС и т. д.

Процедура соскабливания со стенок естественных и патологических полостей, например, матки. Полученный материал отправляется в лабораторию.

Используется чаще всего в гинекологии. Подразумевает взятие мазка со слизистой.

В медицине существуют и другие методы забора биоматериала для гистологии.

Техника проведения процедуры

Лаборатории используют два метода реализации гистологического исследования:

традиционный;
срочный.

Первый используется в плановом порядке, второй – во время хирургических вмешательств.

Традиционный способ

Этот метод применяется при плановой биопсии, срок получения результатов – 5-7 (иногда 10-14) дней. Образцы тканей окрашиваются специальными составами, что позволяет различить элементы клеток или ткани. Ядра окрашивают одним цветом, а для цитоплазмы используют контрастный краситель.

Далее образцы заливаются расплавленным парафином и нарезаются на микрослои толщиной 1-8 микрон. Полученные пластины наносят на предметное стекло, подсушивают и изучают под микроскопом. Одно из главных преимуществ традиционного метода в том, что образцы на стекле хранятся неограниченное время и пациент может их получить на руки. При желании можно перепроверить диагноз.

Срочный способ

Ускоренный метод позволяет исследовать образцы в течение 1 часа. Такой способ ценен, когда хирург должен принять незамедлительное решение об удалении или сохранении органа оперируемого больного. Биоматериал не обрабатывается парафином. Его замораживают, послойно насекают, помещают на предметное стекло и окрашивают. Затем образцы изучают под микроскопом.

Правила забора материала

Достоверность результатов гистологического исследования во многом зависит от соблюдения правил забора биоптата.

Общие нормы по сбору и хранению биоматериала:

Биопсийные процедуры проводят острым инструментом во избежание деформации материала.
Биоптат из патологического образования берется из центра и на границе со здоровыми тканями.
Рекомендации к иссеченному образцу: небольшой размер, плоская форма, толщина 3-5 мм. Эти условия необходимы для равномерной фиксации биоптата.
После забора материала его немедленно помещают в емкость с нейтральным формалином (10%). Соотношение объема биоматериала и фиксатора должно быть 1:10.
Запрещается помещать несколько биопсийных образцов в одну посуду.
Емкость с формалином плотно закрывают во избежание испарения содержимого и высыхания биоптата.
Строго запрещено разделение биоматериала на части для отправки в несколько лабораторий. Патологические изменения могут быть обнаружены только в одной из частей исследуемой ткани. Это может привести к получению противоречивых результатов.
Образец маркируют (ФИО больного, откуда взяты ткани, дата) и отправляют в патогистологическую лабораторию.

Расшифровка результатов

Врач-патоморфолог составляет заключение с подробным описанием обнаруженных морфологических изменений в тканях и выносит предварительный диагноз.

Пациенту на руки выдается бланк-заключение с развернутым описанием результатов патоморфологического исследования. Не рекомендуется самостоятельно интерпретировать полученные данные. Расшифровка результатов гистологии, постановка окончательного диагноза и назначение лечения исключительно в компетенции квалифицированного врача.

Результаты подобных исследований практически не содержат погрешностей и дают исчерпывающую информацию для постановки диагноза. За исключением случаев, когда собран недостаточный объем биоматериала или изменения в тканях незначительны. Также ошибки возможны при неправильном заборе и хранении биоптата.

Забор биоматериала для исследования в гинекологии осуществляется для проведения анализов на микрофлору, цитологию, гистологию и другие виды. В зависимости от типа исследования производится взятие мазка, отделяемого половых органов или фрагмента мягких тканей.

Для чего проводится взятие биоматериала

Скрининговые исследования

Лабораторные исследования — важнейшая составляющая диагностики состояния здоровья женских половых органов. Профилактически анализы следует проходить не реже раза в год.

Особенного внимания требуют следующие ситуации:

нарушение менструального цикла;
подготовка к беременности;
проблемы с зачатием;
подготовка к установке внутриматочной спирали;
назначение гормональной терапии.

Многие патологии женских половых органов развиваются бессимптомно или со стертой симптоматикой, и проявляются на поздних стадиях, когда лечение становится проблематичным. Поэтому крайне важно идентифицировать патологию как можно раньше, когда для достижения положительных результатов можно использовать более щадящую и кратковременную терапию.

Гинекологические заболевания

Существует ряд симптомов, появление которых является поводом внепланового посещения гинеколога:

зуд, боль в области половых органов;
покраснение или возникновение пятен на кожных покровах и слизистой оболочке гениталий;
появление новообразований, гнойников в паховой области;
необычные выделения из влагалища;
появление неприятного запаха от половых органов и менструальных выделений.

Взятие биоматериала на анализ

Подготовка к проведению исследований любого вида подразумевает следование следующим правилам:

запрет половых контактов в течение как минимум двух суток до процедуры;
отмена медикаментозной терапии местного применения (спринцевания, свечи, и т. д.), в случае невозможности отмены необходимо проконсультироваться с лечащим врачом;
исследование проводится не ранее 5 дня цикла и не позже, чем за неделю до начала менструальных кровотечений.

Взятие биоматериала обычно происходит во время гинекологического осмотра. В зависимости от требуемого материала, выделяют:

Взятие мазка. Мазок, или соскоб слизистой оболочки, берется для исследования на микрофлору (бактериоскопию), цитологию и др. Осуществляется быстрым соскабливанием с помощью специального модифицированного шпателя или щеточки, после чего материал наносится на предметное стекло и передается в лабораторию.
Взятие отделяемого. Отделяемое (выделения, слизь, и прочее) берется с помощью стерильного тампона или ватной палочки, которой просто снимают биоматериал с поверхности слизистой оболочки. Для взятия отделяемого шейки матки тонкий тампон аккуратно вводится в цервикальный канал и несколько секунд вращается, не дотрагиваясь до стенок влагалища. Для анализа содержимого полости матки используется специальный инструмент вроде шприца-аспиратора, имеющий на конце небольшой покрытый зонд, который вводится в цервикальный канал и набирает в шприц биоматериал. В случае вскрытия абсцессов гной (для определения возбудителей инфекции) берется тем же способом.
Биопсия тканей. Для биопсии требуется не просто соскоблить, а срезать небольшой участок мягкой ткани влагалища или шейки матки. Применение анестезии для проведения процедуры необязательно, это зависит от индивидуальных особенностей пациентки и определяется решением лечащего врача.

Существует несколько способов проведения биопсии:

простой (или пункционный) — проводится путем вырезания маленького кусочка поверхности мягких тканей;
метод эндоцервикального кюретажа — осуществляется соскребанием или выскабливанием слизистых выделений с эндоцервикса с помощью специальной кюретки;
радиоволновым или электрохирургическим методом, при котором биопсия проводится с помощью тонкопроволочной петли, через которую пропускается слабый электрический заряд;
клиновидный или конизационный способ является наиболее обширной формой биопсии, при котором вырезается конусообразный образец ткани.

Результаты всех анализов чаще всего поступают напрямую к лечащему врачу и обсуждаются с пациенткой исключительно на личном приеме.

Для того, чтобы результаты тестирования были правильными, а также не потребовался повторный забор проб, следует соблюдать условия забора и транспортировки биоматериала. Важно, что для интерпретации результатов исследований во многих случаях необходимы клинические данные пациента. Необходимо к образцам приложить не только направление, но и краткую выписку из истории болезни, копию снимков МРТ головного мозга.

С каждым годом в лаборатории появляются новые возможности бесплатно проводить исследования в рамках научных тем, о результатах которых мы сообщаем семьям. Просим в направлении указывать точные номера телефонов и почтовые адреса, чтобы была возможность оперативно связаться с семьей.

До забора крови очень важно ознакомиться с правилами забора биоматериала.

Время и условия забора биоматериала

Если в описании анализа не указано другое, забор материала рекомендовано производить в утренние часы. В заборе крови натощак для проведения анализов, как правило, нет необходимости, в большинстве случаев кровь берут через 40 минут после еды. В некоторых случаях врач может рекомендовать сдать кровь на анализ аминокислот и ацилкарнитинов натощак. Также может потребоваться соблюдение определенной диеты.

Техника забора крови в пробирки

Предпочтительна венозная кровь.

Забор крови в вакутейнер производится по стандартной технологии.

Переливание крови из шприца в пробирку с антикоагулянтом осуществляется СТРОГО ПОСЛЕ снятия иглы со шприца во избежание разрушения клеточных мембран. Пробирку с кровью необходимо плотно закрыть крышкой и аккуратно перевернуть несколько раз, НО НЕ ВЗБАЛТЫВАТЬ.

Если забор крови будет производиться из катетера, рекомендовано подождать не менее часа после установки нового катетера, только тогда проводить забор крови.

Техника забора крови на карточку-фильтр

Кровь берется из пальца или вены.

На стандартной карточке-фильтр нарисованы круги, все круги должны быть пропитаны кровью насквозь. Дать крови полностью высохнуть, держа карточку на чистой поверхности при комнатной температуре. Пятна крови на фильтровальной бумаге должны быть сухими, четкими, не смазанными.

ОБРАЗЕЦ КРОВИ ВКЛАДЫВАЕТЕ В ЧИСТЫЙ КОНВЕРТ, ЛИБО В ЧИСТЫЙ ФАЙЛ.

ОБРАЗЕЦ КРОВИ НЕ ДОЛЖЕН СОПРИКАСАТЬСЯ С ГРЯЗНОЙ ПОВЕРХНОСТЬЮ И ОБРАЗЦАМИ ДРУГИХ ПАЦИЕНТОВ.

Пробирки, фильтры

Для проведения исследований требуются пробирки с разными консервантами

Пробирки с ЭДТА

Пробирки с Гепарином

Фильтр №903

Стерильный контейнер для сбора мочи

Мочесборники для новорожденных

Подпись пробирок и контейнеров

Подпись пробирок осуществляется СРАЗУ после забора крови лично медицинским персоналом. Каждую пробирку и контейнер с биоматериалом необходимо подписать. Для этого можно использовать шариковую ручку, перманентный стойкий к воде тонкий маркер. Проверьте, не стирается ли надпись при намокании. На пробирке указывается:

Ф.И.О.пациента, и его родство, если необходимо (отец, мать, пробанд и т.п.)
Дата взятия материала.
Время взятия материала.
Консервант (ЭДТА, гепарин и т.п.), если не указано производителем на пробирке.

Внимание! Пишите разборчиво! Если на пробирке не помещается вся информация полностью, подпись можно сокращать, подробное описание пробирок можно приложить на отдельном листе бумаги и вложить в посылку с пробирками.

Контроль качества биоматериала

Если кровь свернулась, гемолизирована или ее не достаточно, обязательно обратитесь в лабораторию по телефону или по электронной почте и выясните, годится ли такой материал для конкретного анализа. Чаще всего для анализа лизосомных ферментов и ДНК-диагностики такая кровь не пригодна. В некоторых случаях вам могут предложить альтернативные способы взятия биоматериала. Биоматериал не надлежащего качества будет немедленно утилизирован лабораторией. Внимательно читайте условия доставки биоматериала.

Доставка биоматериала

Доставка образцов должна производиться как можно быстрее (см.требования ниже). Пробирки и контейнеры с биоматериалом помещают в термоконтейнеры или в обычные термосы . Необходимо обеспечить плотное закрытие контейнера, пробирки не должны свободно болтаться и грохотать. Соблюдайте температурный режим (см.описание ниже). Вместе с биоматериалом ОБЯЗАТЕЛЬНО прилагается направление на исследование (см.образцы направлений на сайте) и краткая выписка из истории болезни пациента.

Биоматериал без направлений анализироваться лабораторией не будет.

Ферментная диагностика

Определение активности ферментов В ПЯТНАХ ВЫСУШЕННОЙ КРОВИ методом тандемной масс-спектрометрии. Исследование выполняется при подозрении на:

болезнь Гоше, болезнь Фабри, болезнь Краббе, Ниманна-Пика тип А/В, болезнь Помпе, , муколипидоз, Ганглиозидоз GM1, МПС1, МПС2, МПС3В, МПС4А, МПС6, НЦЛ2. (см.пункты прейскуранта 3.191 (скрининг на ЛБН-1), 3.197 (скрининг на ЛБН-2, включает только измерение хитотриозидазы и кислой липазы), 3.284 (скрининг на ЛБН-3), 3.292 (Ганглиозидоз GM1).

Кровь собирается на стандартную карточку-фильтр (№903), которую применяют для скрининга новорожденных на фенилкетонурию. Кровь может быть как капиллярная (из пальца), так и венозная. Необходимо хорошо пропитать выделенную область на фильтре! На карточке-фильтре обязательно должно быть четко указаны ФИО, кем и откуда направлен пациент, дата рождения, дата взятия образца и телефон лечащего врача. Образец высушивается 2-3 часа при комнатной температуре (нагревать и подвергать образец прямому воздействию солнечных лучей недопустимо) и отправляется в лабораторию с заполненным направлением (см.раздел «документы и реквизиты»).

Подробно с правилами забора крови на данное исследование можно ознакомиться в разделе «Тандемная масс-спектрометрия».

Определение активности ферментов В ЛЕЙКОЦИТАХ И ПЛАЗМЕ КРОВИ. Исследование выполняется при подозрении на: Ганглиозидоз GM1 тип 1,2,3 (beta-D-галактозидаза), Зандхоффа болезнь (Гексозаминидаза (тотальная), Маннозидоз альфа (alpha-D-маннозидаза), Маннозидоз бета (beta-D-маннозидаза), Метахроматическая лейкодистрофия (Арилсульфатаза А), Множественная сульфатазная недостаточность (Арилсульфатаза А, Идуронатсульфатаза), Муколипидоз II, III типа (Гексозаминадаза, N-ацетил-a-D-глюкозаминидаза, beta-D-галактозидаза, a-D-маннозидаза), Мукополисахаридоз I типа (a-L-идуронидаза), Мукополисахаридоз II типа (Идуронатсульфатаза),Мукополисахаридоз VI типа (Арилсульфатаза В), Мукополисахаридоз VII типа (β-D-глюкуронидаза), Тея-Сакса болезнь (Гексозаминидаза А), Фукозидоз (beta-D-фукозидаза).

7-10 мл крови пациента и родителей (через 40 минут – 1 час после еды) собирают в пробирку с гепарином (как правило, зеленая крышка) или с ЭДТА (как правило, фиолетовая крышка). Переливание крови из шприца в пробирку осуществляется СТРОГО ПОСЛЕ снятия иглы со шприца во избежание разрушения клеточных мембран. Пробирку необходимо плотно закрыть крышкой и аккуратно перевернуть вниз-вверх несколько раз. Пробирку с кровью НЕ ВЗБАЛТЫВАТЬ, чтобы не возникло гемолиза, пробирку подписать. Кровь перевозить в термосе с пищевым льдом (1-2 кубика льда). Кровь должна быть доставлена в лабораторию не позже чем через 24 часа после забора. Кровь нельзя замораживать. Если невозможно прислать кровь в указанные сроки, напишите нам письмо, в зависимости от анализа можно предложить другие варианты доставки и сбора биоматериала.

Определение активности галактозо-1-фосфат уридилтрансферазы в крови (галактоземия тип 1)

1мл крови пациента и родителей собирается в пробирки с гепарином (как правило, зеленая крышка). Содержимое пробирок необходимо перемешать, но не встряхивать, чтобы не возникло гемолиза, пробирки закрыть и подписать. Кровь перевозить в термосе с пищевым льдом (1-2 кубика льда на термос). Кровь должна быть доставлена в лабораторию не позже чем через 24 часа после забора. Кровь нельзя замораживать. В направлении обязательно указать, если пациенту проводилось переливание крови или ее компонентов, а также дату этой процедуры.

Исследование метаболитов в крови

Определение аминокислот и ацилкарнитинов в крови методом тандемной масс-спектрометрия

Кровь собирается на стандартную карточку-фильтр (№903), которую применяют для скрининга новорожденных на фенилкетонурию. Кровь может быть как капиллярная (из пальца), так и венозная. Необходимо хорошо пропитать выделенную область на фильтре! На карточке-фильтре обязательно должно быть четко указаны ФИО, кем и откуда направлен пациент, дата рождения, дата взятия образца и телефон лечащего врача. Образец высушивается 2-3 часа при комнатной температуре (нагревать и подвергать образец прямому воздействию солнечных лучей недопустимо) и отправляется в лабораторию с заполненным направлением. Желательно приложить выписку из истории болезни.

Определение оксистеролов в плазме крови (болезнь Ниманна-Пика тип С)

Для определения оксистеролов в плазме крови необходимо строгое соблюдение правил транспортировки биоматериала. 5-7 мл крови пациента собрать в пробирку с консервантом ЭДТА (как правило, фиолетовая крышка), несколько раз аккуратно перевернуть пробирку для перемешивания с консервантом, но не встряхивать во избежание гемолиза. Четко и разборчиво подписать Фамилию Имя Отчество пациента и дату забора крови. Доставлять пробирку с кровью в течение 24 часов при температуре +2-+8 градусов Цельсия, ни в коем случае не замораживать! Кровь перевозить в термосе с пищевым льдом (1-2 кубика льда) или в контейнере с хладоэлементом.

Если кровь невозможно доставить в течение 24 часов необходимо произвести дополнительные манипуляции с кровью в лаборатории, в которой проводится ее забор. После перемешивания с консервантом пробирку необходимо центрифугировать 10 минут при 1000g. После центрифугирования отобрать плазму (надосадочную жидкость) в пробирку типа Эппендорф (если возможно, в две пробирки), не задевая осадок! Далее кровь и пробирки с плазмой необходимо заморозить и возможно хранить при -20 градусах Цельсия. Отправлять такие образцы необходимо в замороженном виде.

Обязательно прислать в лабораторию заполненную карту регистрации клинического фенотипа или выписку из истории болезни. Специальную карту можно скачать в разделе «Документы»

Изофокусирование трансферринов (диагностика врожденных нарушений гликозилирования)

2-3 мл крови пациента собирают либо в пробирку БЕЗ КОНСЕРВАНТА (как правило красная крышка), либо в пробирку С ГЕПАРИНОМ (как правило, зеленая крышка). Содержимое пробирки необходимо перемешать, но не встряхивать, чтобы не возникло гемолиза, пробирку закрыть и подписать. Кровь перевозить в термосе с пищевым льдом (1-2 кубика льда). Кровь должна быть доставлена в лабораторию не позже чем через 24 часа после забора. Кровь нельзя замораживать! Желательно приложить выписку из истории болезни.

Если кровь невозможно доставить в течение 24 часов необходимо, произвести дополнительные манипуляции с кровью в лаборатории, в которой проводится ее забор. После перемешивания с консервантом пробирку необходимо центрифугировать 10 минут при 1000g. После центрифугирования отобрать сыворотку/плазму (надосадочную жидкость) в пробирку типа Эппендорф (если возможно, в две пробирки), не задевая осадок! Далее сыворотку/плазмой необходимо заморозить и возможно хранить при -20 градусах Цельсия. Отправлять такие образцы необходимо в замороженном виде.

Данный анализ возможен на материале пятен крови на карточке-фильтре. (Правила забора крови на фильтр указаны в разделе «Общие рекомендации»)

Определение церулоплазмина (диагностика болезни Вильсона-Коновалова и болезни Менкеса)

2-3 мл крови пациента собирают в пробирку без консерванта (как правило красная крышка). Содержимое пробирки необходимо перемешать, но не встряхивать, чтобы не возникло гемолиза, пробирку закрыть и подписать. Кровь перевозить в термосе с пищевым льдом (1-2 кубика льда). Кровь должна быть доставлена в лабораторию не позже чем через 24 часа после забора. Кровь нельзя замораживать. Желательно приложить выписку из истории болезни.

Если кровь невозможно доставить в течение 24 часов, необходимо произвести дополнительные манипуляции с кровью в лаборатории, в которой проводится ее забор. После перемешивания с консервантом пробирку необходимо центрифугировать 10 минут при 1000g. После центрифугирования отобрать плазму (надосадочную жидкость) в пробирку типа Эппендорф (если возможно, в две пробирки), не задевая осадок! Далее кровь и пробирки с плазмой необходимо заморозить и возможно хранить при -20 градусах Цельсия. Отправлять такие образцы необходимо в замороженном виде.

Определение очень длинноцепочечных жирных кислот, изомеров холестерина (диагностика пероксисомных заболеваний, синдрома Смита-Лемли-Опитца)

5-7 мл крови пациента и родителей (натощак) собирают в пробирку с консервантом (ЭДТА, гепарин). Содержимое пробирки необходимо перемешать, пробирку закрыть и подписать. Рекомендуется за 3 дня до анализа не употреблять в пищу бананы, орехи, шоколад и сыр. Кровь перевозить в термосе с пищевым льдом. Кровь должна быть доставлена в лабораторию не позже чем через сутки после взятия.

Если кровь невозможно доставить в течение суток, необходимо произвести дополнительные манипуляции с кровью в лаборатории, в которой проводится ее забор. После перемешивания с консервантом пробирку необходимо центрифугировать 10 минут при 1000g. После центрифугирования отобрать плазму (надосадочную жидкость) в пробирку типа Эппендорф (если возможно, в две пробирки), не задевая осадок! Далее кровь и пробирки с плазмой необходимо заморозить и возможно хранить при -20 градусах Цельсия. Отправлять такие образцы необходимо в замороженном виде.

Исследование метаболитов в моче

Определение органических кислот методом хромато масс-спектрометрии

Для исследования необходима порция утренней мочи (10-15мл) в стерильном герметичном контейнере. За 3 суток до сбора мочи желательно не употреблять в пищу фрукты, соки, варенье, шоколад, кофе, какао, конфеты. По возможности исключить обильное питье на ночь. Если пациент находится на искусственном вскармливании, необходимо в сопроводительном письме указать принимаемые смеси.

Для детей моложе 4 лет предоставить в лабораторию порцию утренней и дневной мочи в отдельных контейнерах, контейнеры подписать.

После забора мочи рекомендуется добавить в каждую порцию 2 капли хлороформа или заморозить. Перед перевозкой убедиться в герметичности контейнера. Перевозить контейнер в термосе при температуре +2 - +8 градусов Цельсия. При длительной транспортировке (более 12 часов) образец необходимо заморозить (при -20С).

Мочу можно хранить в замороженном состоянии 1-2 дня до доставки в лабораторию.

Определение гликозаминогликанов в моче (электрофорез ГАГ и количественный анализ ГАГ)- мукополисахаридозы вне зависимости от типа

Для исследования необходима порция утренней мочи (10-15мл) в стерильном герметичном контейнере. На ночь перед сбором мочи пациент не должен употреблять большое количество жидкости.

На контейнере с мочой необходимо разборчиво подписать дату забора, фамилию и имя пациента.

Перед перевозкой убедиться в герметичности контейнера. Перевозить контейнер в термосе при температуре +2 - +8 градусов Цельсия. При длительной транспортировке (более 12 часов) образец необходимо заморозить (при -20С).

Мочу можно хранить в замороженном состоянии 1-2 дня до доставки в лабораторию.

ДНК-диагностика

При направлении на ДНК-диагностику обязательно присылать кровь ребенка и родителей. Желательно прилагать к направлению полные клинические данные пациента, выписку из истории болезни, копии снимков МРТ головного мозга и т.д.

ДНК-диагностика митохондриальных заболеваний

Для исследования на частые мутации мтДНК, делеции мтДНК необходимо предоставить в лабораторию 2-3 мл венозной крови в пробирке с ЭДТА, а также обязательно порцию утренней мочи в герметичном стерильном контейнере.

Пробирки необходимо четко и разборчиво подписать, перевозить в термосе с пищевым льдом (1-2 кубика льда). Кровь должна быть доставлена в лабораторию не позже чем через 24 часа после забора.

ДНК-диагностика и технологии секвенирования нового поколения.

Для проведения исследований генов (частые мутации, полный анализ генов) необходимо произвести забор крови 3-5мл в пробирку с консервантом ЭДТА (как правило, фиолетовая крышка). Пробирку с кровью необходимо несколько раз аккуратно перевернуть для перемешивания с консервантом, подписать четко и разборчиво Фамилию Имя Отчество и дату забора крови. Кровь перевозить в термосе с пищевым льдом при температуре +2-+8 градусов или в контейнере с хладоэлементом. Если нет возможности доставить материал в течение 24 часов, образцы можно заморозить (-20 градусов) и переслать в удобное время.

Если невозможно прислать кровь в указанные сроки, в необходимых пробирках, напишите нам письмо, в зависимости от анализа можно предложить другие варианты доставки и сбора биоматериала, например на карточке-фильтре.

Пренатальная диагностика (биопсия Ворсин Хориона)

В качестве плодного материала для проведения биохимической и молекулярно-генетической диагностики используют биоптат хориона ( на сроке 9-11 недель), клетки и амниотическую жидкость (16-21 неделя) или плодную кровь. Ворсины хориона предпочтительный материал для исследования, поскольку возможна ранняя диагностика заболевания у плода. Ворсины хориона должны быть помещены в специальную среду. Флакон должен быть подписан фамилией матери и приложено направление на диагностику по стандартной форме направления на исследования.

Также необходимо приложить кровь беременной женщины и супруга, что необходимо для проведения оценки чистоты биоматериала.

При наступлении беременности необходимо связаться с лабораторией для определения тактики диагностики

Внимание!

Забор биоматериала проводится в специализированных учреждениях.

В медико-генетической консультации вашего региона необходимо получить информацию об учреждениях, которые проводят данную процедуру заранее, и подготовить необходимые для этого справки и направления.

Адреса центров в Москве в которых можно провести процедуры по забору биоматериала у плода:

Центр Медицины плода
г. Москва ул. Мясницкая, д. 32, стр. 1, 3 этаж
http://www.mosplod.ru/
Телефон: 8(495)532-90-00

Перинатальный Медицинский Центр «Мать и дитя»
г. Москва, Севастопольский проспект, д. 24, к. 1.
Телефон: 8(495)331-85-10

Читайте также: